从成人活检建立双通道十二指肠模型

肠道药物研究除了需要屏障,也需要代谢酶与转运蛋白保持相应功能。美国 Emulate 等团队在 eLife 报道十二指肠芯片,采用 3 名健康成人供者的活检组织建立类器官,再把类器官细胞用于肠上皮培养。

双通道装置以多孔弹性膜隔开两侧。十二指肠类器官碎片接种在上侧,人肠道微血管内皮细胞接种在下侧。培养液以 30 μL/h 流动,细胞形成连续上皮后再施加 10% 的周期性形变,频率为 0.2 Hz。

灌流培养 72 小时后,上皮细胞高度由约 14.8 μm 增至 27 μm,细胞表面出现更丰富的微绒毛。第 6 天起可见局部绒毛样起伏;屏障检测显示,3 名供者的芯片均能形成较低通透性的上皮层。

十二指肠芯片的细胞来源、双通道结构与上皮屏障。

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十二指肠芯片的细胞来源、双通道结构与上皮屏障。(Magdalena Kasendra et al. / eLife, 2020, Figure 1;CC BY 4.0)

灌流改善上皮形态,分化标志随培养时间变化

团队单独比较静态、灌流以及灌流加周期形变三种条件。灌流对细胞高度、极性与微绒毛形成有明显作用,短期再加周期形变未显示额外改善。较长时间培养后,细胞层进一步形成绒毛样起伏。

细胞组成也随培养被追踪:第 8 天吸收细胞和杯状细胞的部分标志表达接近成人组织,潘氏细胞相关的溶菌酶表达则随时间下降。团队结合免疫染色中的细胞类型比例判断分化情况。

细胞组成与基因表达更接近成人组织

团队用免疫染色检查吸收细胞、杯状细胞、肠内分泌细胞等类型,并比较芯片、类器官与成人十二指肠组织的转录组。芯片与类器官来自 3 名供者,成人组织参考转录数据来自 2 份样本。

相对成人组织,芯片检测到 1,023 个差异表达基因,类器官为 1,437 个。芯片与成人组织还共有一组相对类器官表达不同的基因,涉及营养吸收、药物代谢及相关功能。这个比较说明,改变培养结构和流动条件后,表达谱的部分特征更接近成人组织。

芯片中 P-糖蛋白(P-glycoprotein,P-gp)、乳腺癌耐药蛋白(breast cancer resistance protein,BCRP)和肽转运蛋白 PEPT1 主要位于上皮顶端侧。对 P-gp 的功能实验使用罗丹明 123 与抑制剂,观察到加入抑制剂后细胞内荧光增加;其他蛋白在该部分主要通过表达和位置表征。

P-gp 抑制剂长春碱使十二指肠芯片中的罗丹明 123 积累为无抑制剂条件的约 1.84 倍,Caco-2 芯片为约 2.14 倍。这说明两种模型都具有相应外排功能;它们在其他转运蛋白的表达量上仍存在差异,例如 Caco-2 的 OATP2B1 和 OCT1 表达高于成人组织参照。

利福平与维生素 D 代谢物诱导 CYP3A4

药物代谢实验聚焦细胞色素 P450 3A4(CYP3A4)。团队用睾酮转化为 6β-羟基睾酮的速率测量酶活性,十二指肠芯片的基础活性约为 55.6 pmol/min/mg,Caco-2 芯片约为 4.9 pmol/min/mg。

随后,团队分别加入 20 μM 利福平和 100 nM 的 1,25-二羟维生素 D3,处理 48 小时。十二指肠芯片中的 CYP3A4 mRNA 分别升至溶剂对照的约 5.3 倍和 4.1 倍,酶活性分别升至约 3.9 倍和 3.6 倍,蛋白检测也支持诱导反应。

Caco-2 芯片对维生素 D 代谢物也出现明显的 CYP3A4 mRNA 增加,但没有相应的蛋白与酶活性变化。

受体表达帮助解释诱导反应的差异

研究还比较了孕烷 X 受体(pregnane X receptor,PXR)与维生素 D 受体(vitamin D receptor,VDR)的基因表达。十二指肠芯片中的表达较高,也更接近成人组织。两类受体参与调控 CYP3A4。

作者提出,Caco-2 模型中较低的 PXR 表达,可能与其对利福平缺乏相应诱导反应有关。

为肠道药物作用研究提供功能参照

本研究将成人细胞来源、双通道结构、灌流和周期形变结合,并用屏障、细胞组成、转录组、转运和酶活性评价模型。药物测试中的 CYP3A4 活性实验另采用 300 μL/h 流速,收集 1 小时外流液,以液相色谱质谱测量代谢产物。

这些结果支持模型用于肠道代谢和药物相互作用的实验研究。当前诱导实验集中在利福平和维生素 D 代谢物,未建立广泛药物集合的人体相互作用预测结果;后续研究可在这一功能基础上扩大测试范围。

来源与延伸阅读

  1. Duodenum Intestine-Chip for preclinical drug assessment in a human relevant model. eLife. 2020. doi:10.7554/elife.50135 ↗