类器官提供细胞，芯片开放肠腔表面
哈佛大学维斯研究所（Wyss Institute）等团队将十二指肠活检来源的类器官与双通道芯片结合，建立原代人小肠模型。类器官先扩增上皮细胞，再用于芯片中的连续上皮层。
上通道容纳类器官来源的肠上皮，下通道容纳人肠微血管内皮，中间为多孔柔性膜。两通道分别灌流；上皮顶端面向流动培养液，可直接取样，也可接触从肠腔侧输入的物质。
内皮共同培养使上皮更快形成连续层：类器官片段单独培养约需 6 天，加入内皮后约需 2 天。后续实验采用流动和周期性拉伸，并在第 8 天切换为分化培养条件。
屏障与细胞组成在同一模型中验证
芯片中形成绒毛样突起和极化上皮，吸收细胞、杯状细胞、肠内分泌细胞及潘氏细胞的相关标志均可检测。移除流动后，即使继续周期性拉伸，也未观察到同样的上皮折叠变化。
荧光染料 Lucifer Yellow 用于测量上皮到下通道的旁细胞通透性。在这组培养设计中，屏障维持至第 12 天；3 名供者的芯片都出现相似的屏障形成趋势。
消化酶和黏液分泌补充形态观察
团队向上通道加入 30 mM 蔗糖，通过流出液中的葡萄糖量评价蔗糖酶—异麦芽糖酶活性，以甘露醇作为不被该酶水解的参照。酶活性随第 4 至第 12 天分化过程升高，3 名供者均有相应变化。
第 12 天收集的上皮侧流出液中，黏蛋白 MUC2 浓度约为 Caco-2 芯片的 10 倍，显示两种模型分泌功能的差别。
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转录组比较定位模型更接近哪段肠道
在一致的扩增与分化时间下，研究比较 3 名供者的芯片与原类器官，并加入人体十二指肠及既有 Caco-2 体系资料。芯片和类器官整体上都比 Caco-2 模型更接近十二指肠；芯片在消化、营养反应和药物转运相关基因集合中更接近原组织。
全转录组与人体十二指肠的相关系数，芯片为 0.6540，类器官为 0.6361；论文报告两者差异有统计学意义。相关性评价与染料通透性、酶活性、黏液测量共同描述了模型表现。
这项研究完成的是组织功能和模型比较，未直接测定一组口服药的吸收率。作者将药物递送、疗效和毒性评价列为后续用途。芯片中的绒毛样结构也尚未完全重现正常肠道的绒毛与隐窝分区。