比较 4 种小肠模型的培养与吸收预测表现

2025 年 7 月 28 日,Bioengineering 发表小肠屏障模型比较研究。德克萨斯农工大学(Texas A&M University)等机构团队将不同细胞来源、组织结构及流动条件并列,考察这些通透性数据如何用于估计人体吸收。

研究包含 Caco-2 细胞、空肠来源 J2 和十二指肠来源 D109 类器官衍生细胞,以及预制 EpiIntestinal 组织。材料有不同肠段及培养形式,各自的结构和基础屏障并不相同,研究先表征再进行通透实验。

部分模型在静态膜插入体系及流体微生理系统中比较,预制组织因支撑结构限制只接受特定静态条件。

人体吸收估计使用实验通透性与分段计算模型结合。研究问题因此包含两部分:体外屏障表现怎样,以及这些数据经过适当校正后如何对应人体药物吸收。

组织结构与培养稳定性呈明显差别

Caco-2 通常形成较均一的单层,类器官衍生细胞呈现不同的形态及部分囊样结构。EpiIntestinal 组织更厚且厚度变化较大,相关上皮、连接和微绒毛染色用于检查各材料的结构。

EpiIntestinal 组织的平均厚度约为 49 微米,高于其他所测组织,厚度变异系数约为 25%。由于不同位置厚度不均,研究对相关上皮标志物的染色仅作定性比较。

J2 和 D109 细胞播种于膜底面时,在流动条件下未能形成稳定附着的组织,因而无法继续进行该配置的测试。

跨上皮电阻显示,J2 与 D109 都在约第 11 至 12 天达到峰值;D109 随即下降,J2 则保持数天平台期。因此 D109 的通透性测试安排得更早。

跨上皮电阻与葡聚糖渗漏的屏障评价

在膜上静态培养时,J2 和 D109 的跨上皮电阻达到或超过 1,500 Ω·cm²,高于 Caco-2;EpiIntestinal 约为 100 至 200 Ω·cm²。膜下静态培养时,J2 和 D109 的电阻又低于相同条件下的 Caco-2,显示排序随配置改变。

葡聚糖实验显示 EpiIntestinal 的渗漏相对较高,并与电阻表现总体对应。J2 和 D109 的渗漏很低,但变异系数达到 85% 至 232%;电阻测量的变异较小。

较低电阻也未直接带来更准确的吸收预测:EpiIntestinal 的电阻较接近文献所述人体肠道范围,其对后续 3 种小分子的吸收估计却偏低。研究因此同时比较结构、电阻、渗漏和具体药物通透性。

用 3 种物质检验肠段吸收模型

研究选择咖啡因、普萘洛尔和吲哚美辛,获得相应通透性数据。人体参考吸收比例分别为 100%、96.3% 和 100%,均为接近完全吸收的实例;膜上或膜下、静态或流动条件没有显著改变这些物质的表观通透性。

研究使用 PECAT(probabilistic environmental compartmental absorption and transit)模型估计肠道吸收比例 Fabs。5 种模拟方案分别组合 Caco-2 的体内外校正、肠段比例,以及直接使用 J2 或 EpiIntestinal 通透性的数据。

静态 Caco-2 数据结合类器官衍生细胞提供的肠段校正,在所研究物质中获得较好的预测。直接采用 J2 数据则明显低估吸收,EpiIntestinal 数据在部分参数设置下也出现低估。

结果显示传统模型和新模型可以提供不同用途的数据。一套稳健的常规通透测量与更具肠段特征的校正信息结合,可能比仅选择结构更复杂的材料更适合这项具体预测任务。

不同肠道体外模型对咖啡因、普萘洛尔和吲哚美辛的通透性测量及吸收比例预测。
不同肠道体外模型对咖啡因、普萘洛尔和吲哚美辛的通透性测量及吸收比例预测。(Haley L Moyer et al. / Bioengineering, 2025, Figure 7;CC BY 4.0)窄屏可横向滑动查看完整图表。

流动条件、培养稳定性与吸收预测的取舍

流动培养改变了部分配置下的跨上皮电阻,同时带来更高变异。Caco-2 在灌流体系中的电阻变异系数接近 50%,约为静态条件的 2 至 3 倍;类器官衍生细胞还存在膜下流动时不能稳定附着的问题。

后续验证需覆盖依赖代谢、外排转运体或其他吸收机制的药物,以及生物药。作者也提出纳入免疫、内皮和微生物组成的可能性,但这些组成是否改善特定药物吸收预测,仍需单独比较。

来源与延伸阅读

  1. Moyer Haley L et al. Human Small Intestinal Tissue Models to Assess Barrier Permeability: Comparative Analysis of Caco-2 Cells, Jejunal and Duodenal Enteroid-Derived Cells, and EpiIntestinalTM Tissues in Membrane-Based Cultures with and Without Flow. Bioengineering. 2025-07-28. doi:10.3390/bioengineering12080809. ↗