DNA 标签让混合培养中的模型可以分别识别
美国南卡罗来纳大学（University of South Carolina）团队提出 StarTrace 平台，给不同患者来源的结直肠癌类器官加入可识别的 DNA 标签，再把模型混合培养，通过标签信号追踪各模型的变化。
研究建立两个不同用途的混合池，分别含 12 和 15 个模型，部分模型在两个池中重复出现，合计涉及 20 个不同模型。每个模型的标签和匹配组织测序资料，用于把测得的信号对应到特定肿瘤来源。
测量对象是混合体系内各模型所占的相对比例。模型受到药物抑制后，其标签比例可能下降；不同模型原本的生长速度及彼此竞争，也可能改变比例，因此需要与无药参照及独立培养作比较。
28 天检测观察持续的药物作用
较长期的试验在 28 天内定期补充药物，并每周采样。团队从混合体系提取 DNA，通过扩增测序统计各标签的相对数量，比较不同药物及时间点的变化。
这套比较复现了部分已知的基因与药物关系。20 个模型中有 13 个对 MDM2 抑制剂 nutlin-3a 相对耐药，其中 12 个有 TP53 变异。另一个 RNF43 变异模型对 PORCN 抑制剂 LGK-974 敏感，外加 WNT 后，这种药物作用减弱。
一个带 ERBB3 变异的模型对伊布替尼有反应。团队将它与同患者正常组织模型混合，再检测肿瘤变异的比例，发现药物下肿瘤相关信号减少。这项实验支持该模型的特定药物敏感性，ERBB3 变异的具体作用仍需进一步功能研究。
多色定量 PCR 用于缩小检测规模
团队进一步设计多色实时定量聚合酶链式反应（quantitative PCR，qPCR），用共同参照和模型特定的标签信号，估计混合池中的各模型比例。它与测序测量在几种药物条件下有正相关：nutlin-3a 的相关系数为 0.89，LGK-974 为 0.79，依托泊苷为 0.59。
缩小到 96 孔板后，试验比较 8 种药物、4 档浓度和 10 天暴露。15 个输入模型中，12 个得到可用于分析的信号；另 3 个在部分无药样本中已低于检测水平，未进入最终药物分析。
96 孔试验仍能区分模型的药物反应，但低丰度模型更难检出。多色 PCR 与测序可结合使用，以补充这类模型的检测。
混合池的药物结果需要独立培养和临床资料检验
作者提出，这种形式有望减少逐株测试的工作量，并帮助观察持续生长中的药物差异。本文尚未与传统 ATP 或活死检测直接比较性能，也没有把模型结果与患者治疗结局作验证。
后续需要检查混合模型之间的竞争、死亡细胞残留 DNA，以及标签和长期培养对模型状态的影响。研究计划在更多模型中比较混合与独立培养，进一步评价功能检测的稳定性和临床用途。