样本库的质量管理要延续到复苏之后
把患者来源类器官保存下来，还需要确认它在后续药物实验中是否保持合适的状态。2024 年，上海交通大学医学院瑞金医院（Ruijin Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine）与上海生物芯片国家工程研究中心（National Engineering Center for Biochip at Shanghai）研究人员在 Chinese Medical Journal 综述可持续培养、保存和复苏的类器官生物样本库，讨论取材、培养、传代、冻存、复苏及后续质量控制。
文章主要围绕上皮组织来源类器官展开。不同组织对处理和培养条件的需求并不相同，作者因此把流程记录与细胞状态检查连在一起：从模型建立到保存、重新培养，各个阶段都需要检查细胞状态。
复苏后的材料既要可存活，也要能与最初组织和既有样本建立身份联系。药敏研究若使用不同传代或保存状态的材料，这些经历会影响比较基础。综述把分子特征、形态和活性列为需要同时关注的方面。
传代后的遗传特征需要与原组织比较
综述援引结直肠癌模型研究指出，短期传代类器官的突变漂移率低于 20%，培养超过 6 个月的长期传代可达到约 50%。作者团队的胃癌研究则以突变共享率描述另一项比较：早期、少于 10 代的类器官与原组织共享率可超过 90%，10–20 代约为 50%–60%。
漂移率与共享率是不同统计，所用组织和培养期限也不同。综述相关段落未展开各比较的模型数量与逐项变异判定。这些研究提示，需要在实际使用的传代版本中检查遗传保真度，适合的传代范围还取决于具体模型。
全基因组、全外显子、RNA 和单细胞 RNA 测序可以从不同层面描述模型。核型与短串联重复序列（short tandem repeat，STR）检测则用于身份等问题。保留组织来源和样本身份，与确认当前细胞的分子状态，是相互关联但不同的任务。
分别检查活性、形态与样本身份
作者列举组织染色、免疫标记、台盼蓝及衰老相关检测，也讨论用图像分析获得类器官数量、直径和活跃比例。不同方法分别反映组织结构、细胞状态或图像特征，需要与样本来源和培养阶段一起解释。
三磷酸腺苷（adenosine triphosphate，ATP）发光法测的是与活细胞代谢相关的信号。样本身份和遗传特征则需要相应的分子检测。结合不同检查结果，有助于判断药物处理后信号的变化与模型基础状态之间的关系。
作者报告，实施规范化流程后，其胃肠肿瘤类器官建立率由约 50% 提高至 90% 以上。该段属于团队经验，没有给出相应尝试总数或对照研究设计，反映的是类器官建立环节的经验。
药物问题决定是否需要加入免疫细胞
上皮类器官通常缺少完整肿瘤微环境。综述援引团队的胃癌类器官–淋巴细胞共培养研究，讨论低剂量地塞米松降低程序性死亡配体 1（programmed cell death ligand 1，PD-L1）和吲哚胺 2,3-双加氧酶 1（indoleamine 2,3-dioxygenase 1，IDO1）相关免疫逃逸的作用；这类问题需要保留肿瘤与免疫细胞的相互作用，单独上皮模型难以提供同样信息。
另一被引研究把患者来源类器官与巨噬细胞共培养，观察弥漫型胃癌对 Aurora 激酶抑制剂的耐药。作者将肿瘤细胞衰老、单核细胞趋化蛋白 1（monocyte chemoattractant protein 1，MCP-1，又称 CCL2）上调及巨噬细胞向 M2 状态变化联系起来，说明药物反应的解释会随模型中是否存在相关细胞而改变。这些是综述引用的研究案例，综述借此讨论共培养组分对药物研究的影响。
文章还讨论基础研究、药物研发和治疗产品等用途下的不同设施与流程安排。其讨论的重点是让质量管理与用途匹配；面向具体药物问题时，样本是否代表原组织、复苏后是否稳定、是否保留必要细胞组分，仍需在各自模型中提供证据。