NAMs新方法学前沿

大面积气道芯片的共培养与样本获取评价

在较大面积双腔芯片中检查气道细胞共培养、上皮分化及细胞/核酸/分泌物样本获取能力。

用途与模型

研究用途
为气道疾病和暴露干预研究检查模型质量,以及常规分子分析的样本兼容性。
模型与细胞来源
Calu-3 上皮细胞用于平台比较;原代人气道上皮与气道成纤维细胞用于共培养,两类实验分别报告。
方法版本
2025 年双腔 PET 膜/动态气液界面版本
实验形式
PET 半透膜分隔上下培养腔,约 92 mm²培养区,两侧独立空气/培养液流动。

材料与平台

细胞
原代上皮来自 3 名健康肺供者;成纤维细胞来自 COPD 移植肺组织,另设 Calu-3 细胞系验证。
培养与平台
双腔 PDMS 芯片、PET 膜和动态气液界面;细胞系空气暴露 10 天,原代共培养延续 21 天。
检测
细胞计数、RNA 产量、BCA 总蛋白、IL-8 及 MUC5AC ELISA、共聚焦免疫染色和流体模拟。

测量指标与分析

  • 回收细胞数与 RNA/总蛋白产量
  • IL-8 及 MUC5AC 分泌
  • 上皮/成纤维细胞位置与上皮分化标志
  • 制备条件下细胞存活

分别比较芯片、孔板和 Transwell 的样本获取,以及浸没/空气暴露和不同培养时间的分化;培养面积和条件差别同时保留。

研究设计与结果

实验条件比较

研究设计
细胞系三平台样本比较,以及原代上皮—成纤维细胞动态共培养。
测试范围
Table1 为 4 次独立实验;原代上皮来源 3 名健康肺供者,各图重复按其图注。
参照体系
24 孔板浸没培养、Transwell 气液界面培养、同芯片浸没状态或早期培养状态。
研究结果
芯片平均回收 162500 个细胞及 1300±300ng RNA;原代共培养第 21 天 MUC5AC 高于第 7 天,染色显示上皮分化。

适用条件与研究局限

  • 未开展治疗药物的临床预测性能验证。
  • PET 膜不模拟周期性伸展;制造表面影响成像。
  • 样本产量比较的培养面积和空气暴露条件不同。

来源与原文

  1. Development of a Widely Accessible, Advanced Large-Scale Microfluidic Airway-on-Chip原始研究 · Bioengineering · 2025-02-13

相关资讯与知识

自定义隐私设置

必要设置始终启用

用于记住你的隐私选择。文章原站配图会向图片提供方发起请求,详见隐私政策。