NAMs新方法学前沿

Caco-2 肠芯片的 TPCA-1 抗炎与屏障检测

用重组炎症因子刺激 Caco-2 上皮管状结构,在 TPCA-1 浓度系列中检测分泌、屏障电阻和细胞代谢活性。

用途与模型

研究用途
比较抗炎效应与上皮屏障损伤,选择能同时保留细胞状态的剂量范围。
模型与细胞来源
Caco-2 人结肠癌细胞系,ECACC86010202,第 47–60 代;胶原基质中的上皮管状模型。
方法版本
2019 年 40 单元 OrganoPlate 炎症刺激与 TPCA-1 测试版本
实验形式
40 单元三通道 OrganoPlate,384 孔板形式;摇动产生灌流,不使用细胞隔膜。

材料与平台

细胞与基质
每芯片约 20,000 个 Caco-2 细胞,4 mg/mL 胶原 I;摇动±7°、每 8 分钟切换。
非感染炎症刺激
从基底侧加入重组 IL-1β 2 ng/mL、IFN-γ 100 ng/mL 及 TNF-α 100 ng/mL,标准药物比较为第 4–7 天。
药物比较
TPCA-1 0.005–20 μM,两侧加药;预处理 2 小时,随后伴随炎症刺激持续 72 小时。
检测
分别测量两侧 IP-10、IL-8 及 CCL20 分泌,用 OrganoTEER 测跨上皮电阻(transepithelial electrical resistance,TEER),以 alamarBlue 检测细胞代谢活性。

测量指标与分析

  • 顶端与基底侧细胞因子分泌
  • 跨上皮电阻 TEER
  • alamarBlue 代谢活性
  • 上皮连接与形态

以炎症刺激未加药芯片为参照计算分泌抑制和屏障变化,拟合浓度反应;不同终点独立比较,细胞代谢活性不换算为死亡比例。

研究设计与结果

实验条件比较

研究设计
采用重组炎症因子刺激后,比较 TPCA-1 各浓度下的细胞因子分泌、屏障及细胞状态。
测试范围
单一 Caco-2 细胞系;图 4 分泌每条件 4–5 芯片、TEER 3–5 芯片、细胞活性 3–4 芯片,均为技术重复。
参照体系
未刺激、炎症刺激未加药以及 TPCA-1 各浓度。
研究结果
5 及 20 μM 强烈抑制细胞因子同时降低屏障和代谢活性;1.25 μM 降低分泌并改善屏障,未显示相同活性下降。

适用条件与研究局限

  • 模型采用细胞系,没有多供者或患者炎症性肠病背景。
  • 标准药物窗口为 72 小时,验证药物为 TPCA-1。
  • 药物比较采用重组炎症因子刺激形成的模型,不包含患者组织验证。

来源与原文

  1. Development of a Gut-on-a-Chip Model for High Throughput Disease Modeling and Drug Discovery.原始研究 · International Journal of Molecular Sciences · 2019-11-12

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