NAMs新方法学前沿

肠道屏障与肺细胞的 5-FU 动态暴露比较

上通道 Caco-2 屏障调节药物转移,下通道分别检测肺癌或肺泡上皮细胞反应。

用途与模型

研究用途
比较给药、撤药与培养液更新形成的浓度时程及细胞效应。
模型与细胞来源
Caco-2 肠道单层;下通道分别为人 A549 肺腺癌细胞或人肺泡上皮细胞(HPAEpiC)。
方法版本
2020 年 Caco-2 与 A549/HPAEpiC 分组双通道实验
实验形式
多孔膜隔开的双层微流控芯片、流动培养、质谱及细胞活力检测。

材料与平台

屏障与流动
Caco-2 在动态流动下培养 4 天,以 ZO-1、电阻和 FD20 通透性检查;下通道培养液更新形成药物下降时程。
给药安排
5-FU 20 μg/mL 加入上通道;动态组 2 小时给药、10 小时撤药,12 小时周期重复共 48 小时;恒定组持续供药 48 小时。
药物测量
收集下通道培养液,以 LC–MS/MS 检测转移后的 5-FU 浓度;20 μg/mL 是上通道加入值。
细胞反应
48 小时后活死染色和 CCK-8 检测目标细胞;两种肺细胞模型分别开展比较。

测量指标与分析

  • 下通道药物浓度时间曲线
  • ZO-1 和屏障功能
  • CCK-8 细胞代谢活力
  • 活死染色

先用荧光素比较浓度控制,再测 5-FU 实际时程,将目标细胞活力与各组供药时间和暴露量联系。

研究设计与结果

实验条件比较

研究设计
动态 12 小时周期、持续 48 小时供药及空白条件;两种肺细胞各自比较。
测试范围
至少 3 次重复实验,Figure7 N=3。
参照体系
无药、动态与持续供药;屏障检测另比较静态、单向与往复流动。
研究结果
动态组下通道浓度随循环升降,峰值约 1 μg/mL,目标细胞活力高于持续处理组。

适用条件与研究局限

  • 两组供药时长及目标暴露不同,未按曲线下面积匹配。
  • CCK-8 为代谢活力检测,死亡另由染色观察。
  • 下降时程用培养液更新实现,没有同时模拟肝代谢和肾排泄或配对人体药代验证。

来源与原文

  1. Modeling Pharmacokinetic Profiles for Assessment of Anti-Cancer Drug on a Microfluidic System原始研究 · Micromachines · 2020-05-29

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