药物研究需要明确施旺细胞模型的功能
施旺细胞（Schwann cells，SCs）支持外周神经轴突，并参与髓鞘形成。2020 年，印第安纳大学医学院（Indiana University School of Medicine）的 Paula V. Monje 在 Cells 发表综述，讨论施旺细胞培养技术，以及细胞身份、分化状态和髓鞘形成的判断依据。
综述指出，培养的施旺细胞已经参与化疗药物相关周围神经病等问题的研究，并讨论了其在获得性和遗传性脱髓鞘病药物测试中的价值。针对这些用途，细胞来自哪里、表现出哪些标志，以及是否具备所需功能，都会影响结果的解释。
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S100β 阳性不足以单独确认细胞身份
培养中的施旺细胞常呈细长形态，但细胞大小和外形会随环境与状态改变。作者列举，衰老或分化后的细胞可呈类似成纤维细胞的外观；只凭显微镜下的形态，容易把状态变化与细胞种类混淆。
S100β 是常用标志，但也需要结合取材来源判断。若培养物明确来自正常外周神经，它有助于识别施旺细胞；来源较复杂，或可能混入中枢神经组织时，单一阳性标志的含义就更有限。
综述建议结合更完整的标志组合，必要时利用转录组或蛋白质组资料确认细胞来源与分化状态。作者特别提醒，从非神经细胞转化得到的模型，或取自邻近中枢神经系统的组织，更需要核对是否混入其他胶质细胞。
表达髓鞘相关分子与形成髓鞘分开测量
在文中介绍的体系里，施旺细胞离开原有神经环境后，可降低髓鞘相关分子的表达，并维持较未成熟的培养状态。细胞仍可增殖，或重新表达部分分化标志，但这些变化本身没有回答它们是否已经形成髓鞘。
作者以环磷酸腺苷（cyclic adenosine monophosphate，cAMP）相关刺激为例：在没有神经元的条件下，可提高部分髓鞘相关蛋白和脂质的表达，但未形成真正的髓鞘，撤除刺激后相关变化还可逆转。
因此，如果药物研究关注髓鞘形成或修复，分子标志应与轴突接触、包裹及髓鞘结构分别观察。蛋白表达增强提供一个终点；细胞是否完成相应结构功能，则需要相应证据。
人、大鼠和小鼠髓鞘模型存在功能差异
综述汇总的结果显示，在支持大鼠施旺细胞形成髓鞘的条件下，人来源施旺细胞并没有同样表现。大鼠施旺细胞可以使大鼠或人来源的背根神经节（dorsal root ganglion，DRG）轴突形成髓鞘，而人施旺细胞在所述共培养条件下未达到同样结果。
这表明差异不能只归给神经元的物种来源，施旺细胞本身及两类细胞的组合也需要考虑。上述比较对应 2020 年综述所讨论的来源与培养条件。
小鼠也有自身的条件差异：保留原有结构的 DRG 外植体可支持髓鞘形成，但将纯化后的小鼠施旺细胞与神经元重新组合，往往更困难。组织结构保留与细胞重新组装，提供的是不同的体外模型。
扩增历史与培养中的细胞比例也会影响结果
即使在能够形成髓鞘的培养体系中，也不是每个接触轴突的施旺细胞都会进入同样状态。作者指出，在所讨论的体系中，只有少数细胞形成髓鞘，且空间分布并不均匀；局部视野可能使研究者高估或低估整体表现。
细胞扩增历史同样重要。综述提到，过度扩增的大鼠施旺细胞可能降低髓鞘形成效率。作者认为，细胞来源、发育阶段和培养经历对再分化能力的影响，需要分别评价。
神经中还存在成熟但不形成髓鞘的施旺细胞类型。作者指出，这类状态在重建培养系统中不易充分重现。因此，评价模型前需要明确研究关注的是有髓神经结构，还是施旺细胞的其他成熟功能。
围绕具体药物问题选择身份与功能终点
这篇综述提供的质量依据，来自细胞来源、标志物和髓鞘形成之间的具体比较。用于药物研究时，应先说明要观察细胞存活、分化标志，还是轴突相关的髓鞘结构，再判断培养模型是否具备相应条件。
综述强调，细胞身份与目标功能要同时纳入解释。相同标志阳性、相似外观或相同培养条件，并不足以使不同来源的施旺细胞成为等价的检测对象；药物相关变化需要结合所选系统实际具有的功能判断。