NAMs新方法学前沿

双通道与 Transwell 混合芯片的肠上皮形态质控

以 Caco-2 或人肠道类器官来源上皮形成单层,再引入基底侧流动产生三维形态,结合形态、细胞标志和同源静态对照确认模型条件。

用途与模型

研究用途
构建用于药物或生物治疗候选吸收、转运研究的顶端和基底侧均可接近的上皮模型,并检查形态和培养平台的可比性;方法文件没有提供新候选药物预测性能。
模型与细胞来源
Caco-2 或人肠道类器官来源上皮;双通道聚二甲基硅氧烷(polydimethylsiloxane,PDMS)多孔膜与 Transwell 插入物混合芯片分别培养。图 4 示例为正常升结肠 C103。
方法版本
2022 年 Nature Protocols 公开作者稿版本
实验形式
双通道上/下供液并可牵张;混合芯片基底供液、顶端静态。相差及微分干涉(differential interference contrast,DIC)及共聚焦成像为主要质控指标。

材料与平台

模型与对照
先形成完整二维上皮单层,再引入基底侧流动;同源静态二维单层或启动流动前形态作为参照。
流动实例
双通道 500 μm 高通道 50 μL/h,对应 0.02 dyne/cm²,并用 10%/0.15 Hz 牵张;混合芯片基底 30 μL/h。流量随几何改变。
形态与标志
连续观察上皮突出和高度,结合 LGR5、MUC2、ZO-1 等空间定位;常规概述为基底流动后 3–5 天,两平台具体步骤均另列 2–3 天。

测量指标与分析

  • 上皮三维突出和高度
  • 干细胞/杯状细胞及连接标志定位
  • 同源静态与流动条件形态差异
  • 培养平台几何及材料对暴露研究的限制

两平台分别报告流动和顶端条件,不将代表图高度当多供者性能;静态芯片可能有营养耗竭,应与同源二维参照一起解释。

研究设计与结果

方法文件报告的验证结果

研究设计
方法文件展示 Caco-2 和类器官来源上皮在双通道或 Transwell 混合平台形成三维结构,并与静态单层及不同平台比较。
测试范围
形态、成像及约 150 μm/70 μm 高度为代表性示例;相关主文未给这一高度比较的统计 n 或供者变异。
参照体系
同源静态二维单层、基底流动前后、双通道与基底单侧流动混合平台。
研究结果
基底侧流动后可出现三维突出及相应细胞/连接标志;相同类器官细胞示例在双通道约 150 μm、混合平台约 70 μm。

适用条件与研究局限

  • 主文概述为 3–5 天,两平台具体步骤均列 2–3 天;作者两处时间描述不同。
  • 只含上皮,未完整重现人体隐窝–绒毛分区,也未验证新药吸收预测率。
  • PDMS 可吸附疏水分子,实际药物暴露与形态质量需分别检查。
  • 静态芯片上通道约 4 μL 可能营养耗竭;一装置一泵限制规模。

来源与原文

  1. 3D in vitro morphogenesis of human intestinal epithelium in a gut-on-a-chip or a hybrid chip with a cell culture insert方法资料 · Nature Protocols · 2022-02-02

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