NAMs新方法学前沿

重力驱动肠肝共培养与 CYP 诱导评价

将原代来源且经人端粒酶逆转录酶(human telomerase reverse transcriptase,hTERT)永生化的人肠上皮屏障与三维人肝癌细胞系 HepG2 C3A 连接,评价 14 天共培养及细胞色素 P450(cytochrome P450,CYP)酶诱导功能。

用途与模型

研究用途
研究肠肝联通培养条件、代谢功能与后续药物吸收或代谢模型的可行性。
模型与细胞来源
人结肠来源永生化上皮、肠肌成纤维细胞和人肝癌细胞系 HepG2 C3A 三维培养。
方法版本
2018 年原研究接受作者稿相关主文
实验形式
两个组织腔以重力往复流连接,1 mL 培养液循环,肠屏障通透另在 Transwell 中测量。

材料与平台

共同培养
两类培养液按 1∶1 混合,含 3% 胎牛血清(fetal bovine serum,FBS);芯片 14 天,每天更换约 50% 培养液,摇床每分钟 3 个周期、约 12° 倾斜。
酶诱导
利福平 25 µM 诱导 CYP3A4,3-甲基胆蒽 1 µM 诱导 CYP1A1,均处理 48 小时,于装配后第 7、14 天检测。
独立通透实验
第 28 天 Transwell 上皮测试普萘洛尔 1 µM、甘露醇 10 µM、咖啡因 10.3 µM,在 1、2、4、8 小时采样;Caco-2 和无细胞膜作为对照。

测量指标与分析

  • 跨上皮电阻(transepithelial electrical resistance,TEER)及表观通透系数(apparent permeability coefficient,Papp)评价肠屏障。
  • 活死染色测量组织活力;培养液尿素、白蛋白及 CYP1A1、CYP3A4 诱导活性评价代谢功能。

比较肠肝联通、肠单独和肝单独 3 个条件,诱导活性相对未诱导对照报告。药物通透与整体芯片酶诱导属于不同实验,分别报告采样时间和对照。

研究设计与结果

实验条件比较

研究设计
三种器官配置与诱导/未诱导条件比较。
测试范围
3 次独立实验,CYP 每次实验每组两个重复;通透研究 n=3。
参照体系
肠肝共培养、肠单独、肝单独,以及未诱导对照;通透另有 Caco-2 和无细胞膜。
研究结果
14 天共培养活力超过 90%;CYP 诱导活性为各单器官的约 2–4 倍。普萘洛尔及咖啡因通透与 Caco-2 有显著差异。

适用条件与研究局限

  • 往复流并非恒定单向流;肠上皮已经永生化、肝端为癌细胞系;未完成完整芯片的药物暴露—代谢—毒性验证。

来源与原文

  1. A Pumpless Body-on-a-chip Model Using a Primary Culture of human Intestinal Cells and a 3D Culture of Liver Cells原始研究 · Lab on a Chip · 2018-07-10

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