NAMs新方法学前沿

CLN2 视网膜芯片的基因递送与蛋白沉积评价

将患者诱导多能干细胞(iPSC)来源视网膜类器官与色素上皮及灌流结合,比较腺相关病毒载体 AAV9.hCLN2 对三肽基肽酶 1(TPP1)表达和线粒体 ATP 合酶 C 亚基(SCMAS)沉积的作用。

用途与模型

研究用途
评价眼部基因递送的体外剂量反应及培养环境影响,结合离芯片模型研究治疗时机。
模型与细胞来源
由 GM16485、GM16486 患者成纤维细胞重编程获得的 CLN2 iPSC(GM27465*A、GM28380*B),以及健康来源细胞;健康对照为 2 位供者的 3 条 iPSC 系。视网膜类器官和 iPSC 分化的视网膜色素上皮(RPE)分别建立。
方法版本
2025 年原研究版本
实验形式
RPE 每孔 15,000 个细胞,预培养 2 周后加载第 123 天类器官;组织室约 27 μL、透明质酸凝胶支撑,以 40 μL/h 灌流。

材料与平台

病毒与芯片剂量
AAV9.hCLN2 携带人 TPP1;按病毒基因组(gc)计,芯片剂量为 6.5 × 10⁹、6.5 × 10¹⁰、2.167 × 10¹¹ gc/孔,处理 28 天。
离芯片比较
类器官给药 5 × 10⁹、5 × 10¹⁰、1.67 × 10¹¹ gc/个;第 88/123 天给药后观察 35 天,第 260 天给药后观察 21 天。AAV9.Null 作载体对照。
检测
免疫染色定量 TPP1、SCMAS;电化学发光免疫测定培养液中的 TPP1;小体积 384 孔和 RPE 预转导另作条件比较。

测量指标与分析

  • 组织 TPP1 荧光强度
  • SCMAS 沉积信号
  • 培养液 TPP1 蛋白浓度
  • 剂量及治疗时机反应

芯片和离芯片各自按相应健康模型归一化。Figure 7 图像按选定区域定量;培养液重复采样与类器官图像分别分析。不同培养体积与给药时长的实验分开比较。

研究设计与结果

实验条件比较

研究设计
第 123 天类器官在芯片与离芯片培养中接受 3 档按细胞数调整的病毒剂量。
测试范围
Figure 7:CLN2-1 为 10–11 个类器官,CLN2-2 为 8 个;CTRL1/2 为 16/14 个。芯片 RPE 图像每个患者模型 1 孔、健康对照 4 孔。
参照体系
各环境未处理与健康对照,以及各自剂量梯度。
研究结果
芯片最低剂量 TPP1 超过健康对照 2 倍,SCMAS 降至接近对照;最低剂量培养液 TPP1 至少为芯片健康对照 100 倍,离芯片约为各自对照 2 倍。

适用条件与研究局限

  • 类器官和重复培养液采样来自有限细胞系,未完成独立患者结局验证。
  • 芯片观察 28 天,离芯片对应组 35 天;病毒绝对剂量随 RPE 增加而调整。

实验条件比较

研究设计
离芯片类器官比较沉积前、沉积初期和较晚阶段给药。
测试范围
2 个患者来源模型的类器官重复。
参照体系
同阶段健康/未处理与 AAV9.Null 对照。
研究结果
早期给药预防或减少 SCMAS;第 260 天中剂量 TPP1 约为对照 55%,沉积减少但未完全恢复。

适用条件与研究局限

  • 未出现明显感光细胞丢失,当前模型偏向早期沉积病理。
  • RPE 预转导后未恢复类器官 TPP1,RPE 贡献机制仍待拆分。
  • 完整免疫环境和视功能终点未测试。

来源与原文

  1. Recreating pathophysiology of CLN2 disease and demonstrating reversion by TPP1 gene therapy in hiPSC-derived retinal organoids and retina-on-chip原始研究 · Cell Reports Medicine · 2025-07-23

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