NAMs新方法学前沿

C9ORF72 患者神经元 RNA 聚集斑高内涵筛选

以 RNA 原位杂交和自动图像分析筛选聚集斑变化,再排除细胞丢失与普遍基因表达抑制。

用途与模型

研究用途
ALS 病理机制、RNA 聚集斑调节及候选分子的多指标复核。
模型与细胞来源
C9ORF72 重复扩增患者 iPSC 分化神经元;主筛一个模型,后续在独立患者背景复核。
方法版本
2025 年 96,200 化合物/患者神经元筛选版本
实验形式
1,536 孔主筛、RNA FISH 和自动成像;浓度反应、通用表达反筛及细胞毒性分别开展。

材料与平台

患者 iPSC 神经元与健康对照
主筛与初次验证使用同批分化模型;后续扩展至 3 位独立供者背景。
RNA FISH、Opera/Operetta 与 Acapella/Harmony
核区内聚集斑计数按细胞数归一,并处理板内位置效应。
报告细胞与 IncuCyte
通用表达抑制反筛、重复相关蛋白及细胞生长为独立模型的机制复核。

测量指标与分析

  • 每细胞 RNA 聚集斑
  • 核/细胞数
  • 浓度反应
  • 通用表达抑制
  • 独立报告模型的重复蛋白与细胞生长

主筛按聚集斑增减和细胞数变化选择候选,随后复测、反筛并扩展患者背景;减少聚集斑的候选另外检查相关蛋白和毒性。

研究设计与结果

机制研究

研究设计
大型单浓度主筛后进行梯度复测、通用表达反筛和患者来源复核。
测试范围
96,200 个化合物主筛;2,952 个进入复测,139 个通过特异性筛选,82 个在 3 位独立供者模型确认。
参照体系
患者溶剂条件、健康背景、不同浓度及机制参照。
研究结果
确认的候选包括增加或减少聚集斑的分子;部分剪接体调节剂减少聚集斑,同时在独立 HEK 报告模型增加重复相关蛋白与细胞毒性。

适用条件与研究局限

  • 82 个为聚集斑调节候选,包含两个变化方向,治疗获益需另行验证。
  • 蛋白/毒性机制使用独立报告细胞;患者神经元中的内源蛋白当时未获得可靠检测。
  • 主文方法与结果对复测浓度/重复描述不同,完整复测设计需结合对应补充版本。

来源与原文

  1. High-throughput screen of 100 000 small molecules in C9ORF72 ALS neurons identifies spliceosome modulators that mobilize G4C2 repeat RNA into nuclear export and repeat associated non-canonical translation原始研究 · Nucleic Acids Research · 2025-04-10

相关资讯与知识

自定义隐私设置

必要设置始终启用

用于记住你的隐私选择。文章原站配图会向图片提供方发起请求,详见隐私政策。